HÜCRENİN YENİDEN YAPILANDIRILMASI: VETERİNER EFFÜZYONLARINDA SİTOLOJİ VE HÜCRE BLOĞU YÖNTEMİNE KARŞILAŞTIRMALI BİR BAKIŞ


Creative Commons License

Yağlı K., Ekinci G., Ekebaş G., Ay M., Güneş V., Ertaş Onmaz N., ...Daha Fazla

Annual ESVP–ECVP Congress 2025 (27–30 August 2025, Turin, Italy), Turin, İtalya, 27 - 30 Ağustos 2025, ss.178, (Özet Bildiri)

  • Yayın Türü: Bildiri / Özet Bildiri
  • Doi Numarası: 10.1016/j.jcpa.2025.10.087
  • Basıldığı Şehir: Turin
  • Basıldığı Ülke: İtalya
  • Sayfa Sayıları: ss.178
  • Erciyes Üniversitesi Adresli: Evet

Özet

GİRİŞ 

Effüzyon sitolojisi, kedi ve köpeklerde inflamatuvar süreçlerin tanımlanmasında değerli bir tanısal yöntemdir. Sitospin ve hücre bloğu teknikleri, seröz ve septik effüzyon örneklerinde hücre kaybını önleyerek tanısal duyarlılığı artırmaktadır. Özellikle hücre bloğu yöntemi, artmış hücresellik ve iyi korunmuş sitomorfolojik detaylar sayesinde tanısal değerlendirmeye önemli katkı sağlamaktadır. İnsan patolojisinde yaygın olarak kullanılmasına rağmen, histolojik ve immünohistokimyasal incelemelere olanak tanıyan ve mikro-biyopsi niteliği taşıyan hücre bloğu tekniği, veteriner sitopatolojide halen yeterince yaygın kullanılmamaktadır. 

GEREÇ VE YÖNTEMLER 

Pleural, peritoneal veya perikardiyal effüzyon tanısı konulan 12 küçük hayvandan (8 kedi, 4 köpek) örnekler toplandı. Her bir örnek üç farklı şekilde işlendi:

  1. Sitospin yaymaları, Cytospin 4 santrifüj cihazı kullanılarak hazırlandı ve Diff-Quick ile Hematoksilen-Eozin boyaları ile boyandı.

  2. Olası patojenlerin saptanması amacıyla mikrobiyolojik kültürler gerçekleştirildi ve tür düzeyinde tanımlama yapıldı.

  3. Hücre blokları Shandon Cytoblock Kiti kullanılarak hazırlandı ve seçilmiş bloklarda immünohistokimyasal boyamalar uygulandı.

    BULGULAR 

    Sitospin yaymaları, inflamatuvar hücre morfolojisinin ayrıntılı olarak değerlendirilmesine olanak sağlamış ve enfekte örneklerde bakterilerin erken dönemde saptanmasını mümkün kılmıştır. Hücre bloğu kesitleri, doku mimarisini korumuş ve tek bir örnekten çoklu immünohistokimyasal analizlerin yapılmasına imkân tanımıştır. Mikrobiyolojik kültürlerde Gram-pozitif koklar (Staphylococcus aureus) ve Gram-negatif basiller (Escherichia coli) izole edilmiştir. Hücre bloğu örnekleri, ileriye dönük araştırmalarda kullanılmak üzere başarıyla arşivlenmiştir.

    SONUÇ 

    Sitospin ve hücre bloğu tekniklerinin birlikte kullanımı, veteriner effüzyon sitolojisinde tanısal doğruluğu artırmaktadır. Bu yaklaşım, tekrar örnekleme gereksinimi olmaksızın güvenilir histolojik ve mikrobiyolojik değerlendirme yapılmasına olanak sağlamaktadır. Hücre blokları, uzun süreli arşivleme ve entegre tanısal potansiyel sunan mikro-biyopsi niteliğinde yapılar olarak önemli bir avantaj sağlamaktadır.

    Background Effusion cytology is a valuable diagnostic tool for identifying inflammatory processes in cats and dogs. Cytospin and cell block techniques enhance diagnostic sensitivity by preventing cell loss in serous and septic effusion samples. The cell block method, in particular, contributes significantly to diagnostic evaluation through increased cellularity and well-preserved cytomorphological details. Although widely used in human pathology, the cell block technique—which facilitates histological and immunohistochemical analyses as a form of micro-biopsy—remains underutilized in veterinary cytopathology. Materials & Methods Samples were collected from 12 small animals (8 cats, 4 dogs) diagnosed with pleural, peritoneal, or pericardial effusion. Each sample was processed in three ways: 1. Cytospin smears were prepared using a Cytospin 4 centrifuge and stained with Diff-Quick and Hematoxylin-Eosin. 2. Microbiological cultures and species identification were performed to detect potential pathogens. 3. Cell blocks were prepared using the Shandon Cytoblock Kit, and selected blocks were subjected to immunohistochemical staining. Results Cytospin smears allowed detailed observation of inflammatory cell morphology and facilitated early detection of bacteria in infected samples. Cell block sections preserved tissue architecture and enabled multiple immunohistochemical analyses from a single sample. Microbiological cultures yielded both Gram-positive cocci (Staphylococcus aureus) and Gram-negative bacilli (Escherichia coli). Cell block samples were successfully archived for future investigations. Conclusion The combined use of cytospin and cell block techniques improves diagnostic accuracy in veterinary effusion cytology. This approach enables safe histological and microbiological evaluation without the need for repeat sampling. Cell blocks function as micro-biopsies, offering long-term archiving and integrated diagnostic potential.